ICS 65.020.01 CCS B 16 45 广 西 壮 族 自 治 区 地 方 标 准 DB45/T 2581—2022 番茄黄化曲叶病毒 RT-PCR 检测方法 Detection method of tomato yellow leaf curl virus by RT-PCR technique 2022-08-25 发布 2022-09-30 实施 广西壮族自治区市场监督管理局  发 布 DB45/T 2581—2022 前 言 本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由广西壮族自治区农业农村厅提出并宣贯。 本文件由广西壮族自治区农业农村厅归口。 本文件起草单位：广西壮族自治区农业科学院蔬菜研究所。 本文件主要起草人：甘桂云、蒋雅琴、李韦柳、康德贤、王益奎、李文嘉、蔡健和、韦福征、黎炎、 吴永官。 I DB45/T 2581—2022 番茄黄化曲叶病毒 RT-PCR 检测方法 1 范围 本文件界定了番茄黄化曲叶病毒RT-PRC检测方法所涉及的术语和定义，规定了番茄黄化曲叶病双生 病毒RT-PCR检测方法的仪器与试剂、采样与样品处理、病毒DNA提取与检测、PCR扩增检测、结果描述及 判定的要求。 本文件适用于广西壮族自治区行政区域内番茄及其近缘属种植株番茄黄化曲叶病毒的检测。 2 规范性引用文件 本文件没有规范性引用文件。 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 番茄黄化曲叶病 Tomato Yellow Leaf Curl 番茄黄化曲叶病由番茄黄化曲叶病毒（Tomato Yellow Leaf Curl Virus）引起，主要症状是植株 生长缓慢，节间缩短，植株明显矮化，叶片变小，顶端叶片发黄并且上卷，整片叶萎缩、褶皱，坐果量 减少，果实变小产生畸形，不能正常转色，果实产量和商品性大幅度降低。 4 仪器与试剂 4.1 检测仪器 包括但不限于以下内容： ——PCR 仪； ——电泳仪； ——凝胶成像系统； ——高速台式冷冻离心机(最高转速 1 5000 r/min 以上)； ——紫外分光光度计； ——超净工作台； ——冰箱(4 ℃和-80 ℃两种)； ——通风橱； ——微量可调移液器(0.5 μL～10 μL，10 μL～100 μL，20 μL～200 μL，200 μL～1 000 μL)； ——配套移液器吸头，Eppendorf 离心管(1.5 mL)； ——PCR 管； ——研钵。 1 DB45/T 2581—2022 4.2 检测试剂 除特别说明外，下列试剂均为分析纯。如下： a) DNA 提取液：100 mmol/L Tris-HCl(pH8.0)，20 mmol/L EDTA，1.4 mol/L NaCl,2％(w/v)CTAB， 4％PVP，40 mmol/L 巯基乙醇； b) TE 缓冲液：含 10 mmol/L Tris-HCl (pH8.0)，1 mmol/L EDTA-Na2 (pH8.0)； c) 50×TAE 电泳缓冲液：242 g Tris，57.1 mL 冰醋酸，100 mL 0.5 mol/L EDTA(pH8.0)定容至 1 000 mL，使用时配制成 1×TAE 稀释缓冲液； d) 溴化乙锭 (EB，1 mg/mL)：戴手套(双层)谨慎称取 EB 20 mg 于棕色试剂瓶中，加入 20 mL 无菌 水，溶解后用黑色袋子包好贮于 4 ℃备用，每 100 mL 凝胶加 50 μL EB； e) 苯酚：氯仿：异戊醇(25:24:1)； f) 氯仿：异戊醇(24:1)； g) 异丙醇； h) 70％乙醇：用无水乙醇和双蒸水配制； i) 琼脂糖凝胶。 注：用于DNA提取的移液器吸头、PCR管应经高压灭菌（(121±2) ℃，15 min)处理并烘干。 5 采样与样品处理 5.1 采样 5.1.1 检测样品 以单个品种为单位，以1 000株为单位，每1 000株采10个样，1 000株以下10个样（10株），重点采 集有疑似症状且无其它病虫害的叶片。对无症状植株采用对角线取样法，每条对角线等距离取5个样（5 株）。 5.1.2 阴性对照样 阴性对照取自脱毒试管苗或种植于网室内的已检测无黄化曲叶病的单株番茄。 5.1.3 阳性对照样 阳性对照选取有矮化、叶片稍褪绿发黄，变小，叶片边缘上卷，叶片增厚等症状的叶片。 5.2 标识与保存 样品统一使用封口袋保存，每个单株样品各置放一个封口袋中，每个品种再统一放在封口袋内。写 好标签，注明采样时间、地点、品种、采集人。确保样品干燥，如能24 h送至检测地，则送检样品常温 保存，送至检测地于-80 ℃保存；超过一个工作日，送检样品采后需马上冷藏，送至检测地于-80 ℃以 下冰箱保存。应避免反复冻融（冻融不超过3次）。 6 病毒 DNA 提取与检测 6.1 DNA 提取 6.1.1 取 0.2 g 叶片，放入预冷的研钵，并倒入适量液氮研磨，将研碎的叶片转入 2 mL 编号离心管并 加入 65 ℃预热的提取液 1 mL，65 ℃水浴 45 min 后 12 000 r/min 离心 10min。 2 DB45/T 2581—2022 6.1.2 取上清液于 1 支干净的 1.5 mL 离心管中，加入等体积苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)，摇匀后 12 000 r/min 离心 10 min。 6.1.3 取上清液于 1 支干净的 1.5 mL 离心管中，加入等体积氯仿:异戊醇(24:1)，摇匀后 12 000 r/min 离心 10 min。 6.1.4 取上清液于 1 支干净的 1.5 mL 离心管中，等体积氯仿:异戊醇(24:1)，摇匀后 12 000 r/min 离 心 10min。 6.1.5 取上清液于 1 支干净的 1.5 mL 离心管中，加入等体积预冷过的异丙醇，轻柔混匀后于-20 ℃下 静止 1 h，最后于 4 ℃下 10 000 r/min 离心 10 min。 6.1.6 弃上清液，沉淀物用 70％乙醇洗涤沉淀 2～3 次，在超净台吹干，用 100 μL TE 溶解沉淀，保 存于-20 ℃冰箱。 6.2 DNA 检测 6.2.1 琼脂糖检测 1％琼脂糖凝胶电泳(EB30 μL，电压110 V)20 min～30 min后，观察凝胶成像系统中是否有DNA谱带。 6.2.2 分光光度计检测 分光光度计检测A260/A280的比值（OD260/OD280）值在1.8～2.0时认为得到的DNA纯度较高，稀释DNA浓度 至50 ng/L。 7 PCR 扩增检测 7.1 PCR 扩增 7.1.1 模板 以提取的总DNA为模板，扩增反应总体积为20 μL，其中包括：DNA模板 2 μL，10×PCR buffer 2 μL，25 mmol/L的MgCl22 μL，10 mmol/L的dNTP2μL，5 μmol/L的上下游引物各2 μL（TYLCV-F：5’ -ACGCATGCCTCTAATCCAGTGTA-3’；TYLCV-R：5’-CCAATAAGGCGAAGCGTGTAGAC-3’），ddH2O补足至 20 μL。按比例配置好体系后于PCR仪中进行PCR扩增。 7.1.2 程序 扩增程序如下： a) 94 ℃预变性 3 min； b) 94 ℃变性，30 s，56 ℃复性，30 s，72 ℃延伸，30 s，30 个循环； c) 最后 72 ℃延伸 10 min，4 ℃保存。 7.1.3 成像 PCR产物用含有核酸染料的1.2％琼脂糖在120 V电压下电泳40 min，最终结果在凝胶成像系统上显示。 7.2 PCR 检测 每次检测包含两个阳性对照、两个阴性对照、检测样品和两个空白样品(ddH2O)。于1.8％～2.5％琼 脂糖凝胶电泳(EB 30 μL，电压130 V)20 min～40 min，观察是否有543 bp特异目的片段扩增条带出现， 是否与预期的扩增产物片段大小相吻合。 3 DB45/T 2581—2022 7.3 结果分析条件判定 结果中如果两个阳性对照有特异目的片段扩增条带出现，且目的片段大小与预期的扩增产物大小相 吻合，为543 bp，而两个阴性对照样品与两个空白样品(ddH2O)都没有特异目的片段扩增条带出现时，结 果有效。否则，此次实验检测结果无效。 8 结果描述及判定 8.1 阴性 没有543 bp特异目的片段扩增带出现，表示样品中无番茄黄化曲叶病毒。 8.2 阳性 有543 bp特异目的片段扩增带出现，且片段大小与预期的扩增产物大小相吻合，表示样品中存在番 茄黄化曲叶病毒。 4 DB45/T 2581—2022 参 [1] [2] 考 文 献 GB 19489—2008 试验室 生物安全通用要求 GB/T 23629—2009 引进植物病原生物安全控制技术要求 5